開發(fā)全自動(dòng)多級(jí)過濾分離外泌體儀器，并通過提取人自體脂肪干細(xì)胞來源外泌體進(jìn)行性能評(píng)價(jià)。方法：確定儀器分離工藝流程，設(shè)計(jì)儀器結(jié)構(gòu)，完成儀器軟硬件開發(fā)；從患者獲取自體脂肪，消化后獲取脂肪干細(xì)胞并進(jìn)行培養(yǎng)傳代，收集第三代脂肪干細(xì)胞培養(yǎng)上清液并初步離心，取上清加入第一級(jí)儲(chǔ)液罐中，通過儀器過濾，將獲取的第三級(jí)濾液進(jìn)行離心并提取外泌體。通過透射電子顯微鏡（Transmission Electron Microscope，TEM）觀察外泌體的形態(tài)，進(jìn)行納米顆粒跟蹤分析（Nanoparticle Tracking Analysis，NTA），分析粒徑、顆粒濃度，并通過蛋白質(zhì)印跡法（Western Blot）檢測(cè)脂肪干細(xì)胞來源外泌體的特異性蛋白表達(dá)，表達(dá)指標(biāo)包括CD63、CD81、TSG101，同時(shí)檢測(cè)GM130判斷檢測(cè)樣品中囊泡被污染的程度。結(jié)果：完成了全自動(dòng)多級(jí)過濾分離外泌體儀器的開發(fā)，由儀器進(jìn)行過濾濃縮并經(jīng)過離心后提取的脂肪干細(xì)胞來源外泌體，在透射電子顯微鏡的觀察下呈圓杯狀，通過納米顆粒跟蹤分析得到的外泌體大部分處于50nm-200nm之間，蛋白質(zhì)印跡法檢測(cè)顯示：提取的外泌體中有CD63、CD81、TSG101的表達(dá)，外泌體獲得量達(dá)到75%，囊泡污染情況處于正常范圍內(nèi)。結(jié)論：全自動(dòng)多級(jí)過濾分離外泌體儀器能實(shí)現(xiàn)外泌體高效快速分離，達(dá)到了臨床應(yīng)用的要求，為臨床外泌體的疾病治療提供了有力的支撐。

關(guān)鍵詞：外泌體；脂肪干細(xì)胞；過濾；濃縮；提取

Multistage Filtration Based Fully Automated Exosomes Separation Instrument and Its Performance Evaluation

Zeng Yangtian¹ Zheng Yi² Liu Kai^2* Li Hong^1*

1(Hangzhou Baiqiao Medical Technology Co.,Ltd., Hangzhou 310018)

2 (Shanghai Ninth People's Hospital, Shanghai Jiao Tong University School of Medicine, Shanghai 200011)

3 (EVERFINE Test and Calibration Technology Co., Ltd, Hangzhou, Hangzhou 310053)

Abstract: Objective: to develop a fully automated multistage filtration instrument for the separation of exosomes and to evaluate the performance by extracting human autologous adipose-derived stem cells(ADSCs) exosomes. Methods: To determine the instrument separation process, design the instrument structure and complete the instrument development of both hardware and software; to obtain and digest the autologous fat from patients, obtain and subculture the adipose-derived stem cells, collect the supernatant of the third generation adipose-derived stem cell culture and make initial centrifugation, add the supernatant to the first reservoir then filter through the instrument, centrifuge the obtained third stage filtrate and extract exosomes. The morphology of the exosomes was observed by Transmission Electron Microscope (TEM). Nanoparticle Tracking Analysis (NTA) was performed to analyze particle size and concentration. Western Blot (WB)was used to detect the specific protein expression of the adipose-derived stem cells exosomes, which including CD63, CD81, TSG101 and GM130.And the Western Blot Method also was used to detect the contamination extent of vesicles in the assay samples. Results: The development of a fully automated multistage filtration and separation instrument for exosomes was completed. The adipose-derived stem cell exosomes, which extracted by the instrument after filtration and concentration and centrifugation, were observed in a circular-cup shape by TEM. Most of the exosomes obtained by NTA were in the range of 50 nm-200 nm. WB showed that the extracted exosomes contained the expression of CD63, CD81, TSG101 and CD81. Exosomes were obtained up to 75% and vesicle contamination was within the normal range. Conclusion: The fully automated multistage filtration and separation of exosomes instrument can achieve efficient and rapid separation of exosomes, which meets the requirements of clinical application and provides a strong support for clinical exosomes in disease treatment.

Keywords: Exosomes; Adipose-Derived Stem Cells; Filtration; Concentration; Extraction

引言

外泌體（exosome）是直徑在30～150nm的胞外囊泡^[1-3]，研究^[4-8]表明，外泌體廣泛存在于尿液、胸腹腔積液、乳汁、唾液等體液中，很多細(xì)胞可以分泌外泌體，如MSCs、血細(xì)胞、內(nèi)皮細(xì)胞、神經(jīng)細(xì)胞、腫瘤細(xì)胞等。外泌體攜帶大量胞內(nèi)和胞外的生物信息，可作為細(xì)胞通訊和細(xì)胞外基質(zhì)重塑的媒介，與人類健康和疾病息息相關(guān)^[9-10]，通過霧化吸入MSC-EVs給藥途徑對(duì)于急性呼吸窘迫綜合征的治療有重大意義^[11]；朱紅艷^[12]課題組研究表明：CBSA/siS100A4能顯著抑制惡性乳腺癌細(xì)胞的生長(zhǎng)；馬陶陶^[13]團(tuán)隊(duì)揭示：外泌體介導(dǎo)腎小管上皮細(xì)胞與巨噬細(xì)胞之間交互對(duì)話在糖尿病腎病治療進(jìn)程中發(fā)揮重要作用；張松英^[14]教授團(tuán)隊(duì)發(fā)現(xiàn)：通過調(diào)控蛻膜NK細(xì)胞（母源性）的代謝水平從而改善蛻膜NK細(xì)胞分泌胎盤發(fā)育所需因子的水平。正是因?yàn)榻┠陙硗饷隗w在臨床診斷、疾病治療、組織再生等方面逐漸凸顯出重要的價(jià)值，世界各國(guó)研究者對(duì)于外泌體特殊性質(zhì)、結(jié)構(gòu)的研究愈發(fā)深入。

傳統(tǒng)的外泌體分離方法有超速離心法、過濾法、免疫磁珠法、微流控芯片等^[15]，超速離心法因?yàn)閮x器設(shè)備昂貴難以大范圍普及，免疫磁珠法由于夾雜其他外來成分難以進(jìn)行臨床應(yīng)用，微流控芯片法雖然分離純度高，但是提取量很小，難以大量推廣，過濾法雖然技術(shù)成熟，但是目前處于手工處理階段，費(fèi)勁、費(fèi)時(shí)且容易造成污染^[16-17]。

本文針對(duì)過濾法進(jìn)行改進(jìn)，對(duì)過濾孔徑、過濾級(jí)數(shù)進(jìn)行了完善，對(duì)整個(gè)過濾過程進(jìn)行智能控制開發(fā)，以期達(dá)到適應(yīng)臨床高效、快速、安全應(yīng)用的要求，并對(duì)儀器的外泌體制備效果進(jìn)行了實(shí)驗(yàn)評(píng)價(jià)。

1 方法

1.1 儀器設(shè)計(jì)

1.1.1 儀器總體組成

儀器總體由兩個(gè)儲(chǔ)液罐、一個(gè)多級(jí)過濾單元、一個(gè)電機(jī)驅(qū)動(dòng)器、柱塞泵、兩個(gè)壓力傳感器、一個(gè)電機(jī)、直線運(yùn)動(dòng)機(jī)構(gòu)、觸摸屏等部分組成（圖1）。整體由PLC與數(shù)據(jù)采集模塊控制，壓力傳感器的數(shù)值實(shí)時(shí)在觸摸屏上顯示，經(jīng)由觸摸屏實(shí)現(xiàn)人機(jī)交互，儀器有自動(dòng)和人工兩種模式，根據(jù)工作場(chǎng)景進(jìn)行切換。

1.1.2 儀器工作流程

使用儀器對(duì)目標(biāo)液體濃縮的流程如圖2所示：在一號(hào)儲(chǔ)液罐中加入液體，開關(guān)上電，控制器控制電機(jī)驅(qū)動(dòng)器，由電機(jī)驅(qū)動(dòng)器控制電機(jī)啟停，當(dāng)電機(jī)開啟，直線運(yùn)動(dòng)機(jī)構(gòu)帶動(dòng)柱塞泵運(yùn)動(dòng)，吸液管將一號(hào)儲(chǔ)液罐中的液體吸入后，經(jīng)管路排入多級(jí)過濾單元，多級(jí)過濾單元的入口處和出口處裝有壓力傳感器，通過實(shí)時(shí)檢測(cè)一級(jí)穩(wěn)壓室和二級(jí)穩(wěn)壓室壓力傳感器的差值，根據(jù)差值大小來控制柱塞泵的開閉時(shí)間使得多級(jí)過濾單元內(nèi)的壓差恒定。致使液體能通過多級(jí)過濾單元，以達(dá)到自動(dòng)過濾不同直徑微粒的目的，儀器運(yùn)行結(jié)束后，將直徑小于多級(jí)過濾單元最底層濾膜直徑的微粒和廢液通過終端管路排入二號(hào)儲(chǔ)液罐中，實(shí)驗(yàn)人員可以根據(jù)需要在多級(jí)過濾單元中獲取目標(biāo)產(chǎn)物。

圖1全自動(dòng)外泌體提取濃縮儀

Fig.1 Automatic Exosome Filtration Instrument

圖2儀器工作流程圖

Fig.2 Instrument work flow chart

1.2 儀器性能評(píng)價(jià)

1.2.1 實(shí)驗(yàn)材料

1.2.1.1實(shí)驗(yàn)用主要試劑

脂肪干細(xì)胞培養(yǎng)添加劑（UltraGRO^TM，AventaCell BioMedical，美國(guó)）；PBS（Gibco，美國(guó)）；0.25%胰酶（Gibco，美國(guó)）；胎牛血清（Gibco，美國(guó)）；三抗（Gibco，美國(guó)）；α-MEM、低糖與高糖DMEM（Gibco，美國(guó)）；膠原酶（Collagenase NB4，Serva，德國(guó)）； BCA蛋白定量試劑盒（碧云天，中國(guó)）。

1.2.1.2實(shí)驗(yàn)用主要儀器

一次性無菌10 cm培養(yǎng)皿（BD，美國(guó)）；100 kDa超濾管（Milipore，美國(guó)）；超凈工作臺(tái)（蘇州凈化設(shè)備有限公司，中國(guó)）；酶標(biāo)儀（Thermo Fisher Scientific，美國(guó)）；微量電子秤（隆成儀器設(shè)備有限公司，中國(guó)）；流式細(xì)胞儀（Beckman，美國(guó)）；溫度可調(diào)節(jié)臺(tái)式離心機(jī)(Thermo Fisher Scientific，美國(guó));血球計(jì)數(shù)板（上海市求精生化試劑儀器有限公司，中國(guó)）；溫度可調(diào)節(jié)搖床（太倉(cāng)市華美生化儀器廠，中國(guó)）；恒溫水浴鍋（上海赫田科學(xué)儀器有限公司，中國(guó)）。

1.2.2 實(shí)驗(yàn)方法

1.2.2.1脂肪干細(xì)胞的分離培養(yǎng)

本研究的脂肪來源于腹部或大腿內(nèi)側(cè)，為患者行抽脂術(shù)后的廢棄脂肪?；颊咭押炇鹬橥鈺饩璜I(xiàn)廢棄脂肪用于醫(yī)學(xué)研究，研究方案已經(jīng)過上海交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬第九人民醫(yī)院倫理委員會(huì)批準(zhǔn)。

獲取捐贈(zèng)脂肪后，通過膠原酶消化脂肪，離心后提取原代脂肪干細(xì)胞。脂肪干細(xì)胞接種于含有脂肪干細(xì)胞培養(yǎng)添加劑的α-MEM培養(yǎng)基的10cm培養(yǎng)皿中，于5%CO₂，37℃條件下培養(yǎng)。細(xì)胞接近80%-90%融合時(shí)，使用含EDTA的0.25%胰酶消化細(xì)胞進(jìn)行傳代。使用第3代脂肪干細(xì)胞進(jìn)行外泌體提取。

1.2.2.2脂肪干細(xì)胞來源外泌體提取

將收集第3代脂肪干細(xì)胞上清液倒入外泌體提取儀器進(jìn)液罐中，使用儀器進(jìn)行過濾操作。將收獲的濾液加入100kDa的milipore超濾管中，超濾法提取外泌體。以3000g，15-20min，4℃條件離心，至超濾管內(nèi)管上清液幾乎全被離心下去，再用PBS洗滌一次，離心至內(nèi)管僅剩余200-500μL含有外泌體的PBS。離心完成后，吸出含有外泌體的PBS，保存在4℃冰箱。

1.2.2.3脂肪干細(xì)胞來源外泌體鑒定

就目前的分離方法而言，很難得到特別純凈并且單一的外泌體，所以需要對(duì)經(jīng)儀器濃縮后離心所得到的外泌體鑒定。本研究根據(jù)國(guó)際細(xì)胞外囊泡學(xué)會(huì)制訂的標(biāo)準(zhǔn)采取三種方法進(jìn)行鑒定，以保證鑒定的準(zhǔn)確性。①透射電子顯微鏡（TEM）觀察預(yù)處理后外泌體的形態(tài)^[18];②基于尺寸的納米顆粒跟蹤分析（NTA）：用光束照射外泌體中的粒子，通過粒子的散射光和布朗運(yùn)動(dòng)來記錄每個(gè)粒子的路徑，并且能確定粒子運(yùn)動(dòng)的平均速度和擴(kuò)散系數(shù)，再經(jīng)由數(shù)學(xué)計(jì)算得出外泌體的濃度和尺寸分布^[19];③使用蛋白質(zhì)印跡法（Western Blot）檢測(cè)外泌體表面的特異性蛋白marker ^[20]。

1.2.3 主要觀察指標(biāo)

①透射電子顯微鏡觀測(cè)脂肪干細(xì)胞來源外泌體形態(tài)；②納米顆粒跟蹤分析，分析獲取外泌體粒徑和濃度；③蛋白質(zhì)印跡法鑒定脂肪干細(xì)胞來源外泌體表達(dá)蛋白。

2 結(jié)果

2.1 脂肪干細(xì)胞形態(tài)

圖3（a）為清洗純化的脂肪，圖3（b）為第三代的人脂肪干細(xì)胞在倒置顯微鏡下形態(tài)學(xué)觀察呈長(zhǎng)梭型。

2.2 外泌體透射電子顯微鏡鑒定結(jié)果

如圖4（a）所示,在透射電子顯微鏡下脂肪干細(xì)胞來源外泌體大小在30nm-200nm之間，形態(tài)呈外泌體典型的圓杯狀。

2.3 外泌體標(biāo)志物蛋白質(zhì)印跡法鑒定結(jié)果

在國(guó)際細(xì)胞外囊泡學(xué)會(huì)所標(biāo)準(zhǔn)^[21]中，必須包含細(xì)胞內(nèi)體或外泌體質(zhì)膜蛋白、與外泌體分泌相關(guān)的胞質(zhì)蛋白，并排除一個(gè)非外泌體結(jié)構(gòu)或相關(guān)的廣域細(xì)胞質(zhì)蛋白，該囊泡才能稱之為外泌體，如圖4（b）所示蛋白質(zhì)印跡法檢測(cè)到外泌體質(zhì)膜蛋白CD63、CD81的表達(dá)以及分泌相關(guān)的ESCRT復(fù)合體蛋白中TSG101的表達(dá)，而幾乎不表達(dá)高爾基體蛋白GM130，證明所分離的產(chǎn)物含有外泌體，其純度較高。

2.4 外泌體納米顆粒跟蹤分析結(jié)果

如圖5所示，通過納米顆粒追蹤分析所得到的顆粒粒徑分布集中在30nm-200nm之間，顆粒的濃度結(jié)果，符合外泌體粒徑特征^[22]。

圖3 實(shí)驗(yàn)材料。（a）實(shí)驗(yàn)所用脂肪；（b）人脂肪干細(xì)胞的形態(tài)

Fig.3 Experimental materials.(a)Fat used in experiments；(b)Morphology of human adipose stem cells

圖4外泌體形態(tài)與特異性蛋白鑒定。(a)透射電子顯微鏡顯示的外泌體的形態(tài)特征;(b)蛋白質(zhì)印跡法檢測(cè)外泌體蛋白表達(dá)

Fig.4 Exosome morphology and specific protein identification.(a)Morphological characteristics of exosomes displayed by transmission electron microscopy;(b)Western blotting to detect exosome protein expression

圖5 NTA檢測(cè)外泌體粒徑分布
Fig.5 NTA detection of exosome particle size distribution

3 討論

對(duì)于多級(jí)過濾的全自動(dòng)外泌體分離儀器進(jìn)行的性能評(píng)價(jià)實(shí)驗(yàn)，采用自體脂肪干細(xì)胞作為原材料，以自體脂肪干細(xì)胞提取外泌體的臨床意義在于：自體脂肪來源廣泛，且容易獲取，同時(shí)不會(huì)產(chǎn)生排異性，便于應(yīng)用。同時(shí)全自動(dòng)多級(jí)過濾分離外泌體儀器采用非接觸式設(shè)計(jì)，加入了智能控制閉環(huán)設(shè)計(jì)，能有效的節(jié)省人工成本，使得提取的外泌體純度高、無污染，達(dá)到臨床所需外泌體標(biāo)準(zhǔn)。從實(shí)驗(yàn)評(píng)價(jià)結(jié)果來看通過對(duì)脂肪干細(xì)胞來源外泌體的濃縮，離心提取，并經(jīng)過檢測(cè)外泌體的三個(gè)標(biāo)準(zhǔn)方法鑒定：提取微粒是外泌體，并且污染度處于正常范圍內(nèi)，證明全自動(dòng)外泌體過濾儀器對(duì)含外泌體的上清過濾濃縮，所得濃縮液進(jìn)行分離可得到完整外泌體，外泌體提取所需處理時(shí)間遠(yuǎn)小于傳統(tǒng)提取方法，達(dá)到臨床應(yīng)用的要求。

該儀器的完成能實(shí)現(xiàn)外泌體不同亞群顆粒大?。?/span>30-150nm）的精準(zhǔn)細(xì)分提取，為研究外泌體亞群結(jié)構(gòu)與功能的關(guān)系提供了有價(jià)值的工具，為臨床治療提供了快速高效省力的手段，目前該儀器仍然存在一定的問題，部分外泌體會(huì)黏附于濾膜上導(dǎo)致產(chǎn)物損失以及活性喪失。在接下來的研究，會(huì)進(jìn)一步改進(jìn)外泌體提取儀，采用切向流等新型過濾方法，對(duì)該缺點(diǎn)進(jìn)行糾正，減少濃縮液的浪費(fèi)，以期達(dá)到更高的外泌體獲得量。

4 結(jié)論

全自動(dòng)多級(jí)過濾分離外泌體儀器能實(shí)現(xiàn)外泌體高效快速分離，達(dá)到了臨床應(yīng)用的要求，為臨床外泌體的疾病治療提供了有力的支撐。

參考文獻(xiàn)

[1] Raposo G,Stoorvogel W. Extracellular vesicles: exosomes, microvesicles, and friends.[J]. The Journal of cell biology,2013,200(4).

[2] Lee Y,El A S,Wood MJA. Exosomes and microvesicles: extracellular vesicles for genetic information transfer and gene therapy.[J]. Human molecular genetics,2012,21(R1).

[3] Marqués-García F,Isidoro-García M. Protocols for Exosome Isolation and RNA Profiling.[J]. Methods in molecular biology (Clifton, N.J.),2016,1434.

[4] Li P,Kaslan M,Lee SH,et al. Progress in exosome isolation tech-niques[J]. Theranostics,2017,7( 3) : 789-804.

[5] Clark DJ,Fondrie WE,Liao Z,et al. Redefining the breast cancer exosome proteome by tandem mass tag quantitative proteomics and m*riate cluster analysis[J]. Anal Chem,2015,87(20) : 10462-10469.

[6] Yu B,Zhang X,Li X. Exosomes derived from mesenchymal stem cell[J]. Int J Mol Sci,2014,15(3) : 4142-4157.

[7] 葉冬熳,于韜. 腫瘤外泌體的提取與鑒定[J]. 現(xiàn)代腫瘤醫(yī)學(xué),2018,26(20),3341-3343.

[8] Chan BD，Wong WY,Lee MM,et al. Exosomes in inflammation and inflammatory disease[J]. Proteomics,2019,13: e1800149.

[9] MATHIEU M, MARTIN-JAULAR L, LAVIEU G, et al. Specificities of secretion and uptake of exosomes and other extracellular vesicles for cell-to-cell communication [J]. Nat Cell Biol, 2019, 21(1): 9-17.

[10] SHU S, YANG Y, ALLEN C L, et al. Purity and yield of melanoma exosomes are dependent on isolation method [J]. J Extracell Vesicles, 2020, 9(1): 1692401.

[11] Shi MM, Yang QY, Monsel A, et al. Preclinical efficacy and clinical safety of clinical-grade nebulized allogenic adipose mesenchymal stromal cells-derived extracellular vesicles. J Extracell Vesicles. 2021;10(10):e12134.

[12] Zhao L, Gu C, Gan Y, Shao L, Chen H, Zhu H. Exosome-mediated siRNA delivery to suppress postoperative breast cancer metastasis. J Control Release. 2020;318:1-15.

[13] Jiang WJ, Xu CT, Du CL, et al. Tubular epithelial cell-to-macrophage communication forms a negative feedback loop via extracellular vesicle transfer to promote renal inflammation and apoptosis in diabetic nephropathy. Theranostics. 2022;12(1):324-339.

[14] Jiang L, Fei H, Jin X, et al. Extracellular Vesicle-Mediated Secretion of HLA-E by Trophoblasts Maintains Pregnancy by Regulating the Metabolism of Decidual NK Cells. Int J Biol Sci. 2021;17(15):4377-4395.

[15] WEN S W, LIMA L G, LOBB R J, et al. Breast cancer-derived exosomes reflect the cell-of-origin phenotype [J]. Proteomics, 2019, 19(8): e1800180.

[16] Yang Dongbin,Zhang Weihong,Zhang Huanyun,Zhang Fengqiu,Chen Lanmei,Ma Lixia,Larcher Leon M,Chen Suxiang,Liu Nan,Zhao Qingxia,Tran Phuong H L,Chen Changying,Veedu Rakesh N,Wang Tao. Progress, opportunity, and perspective on exosome isolation - efforts for efficient exosome-based theranostics.[J]. Theranostics,2020,10(8).

[17] 白俊,任軍,王均,張紅梅,楊靜悅,張利旺.離心過濾法提取外切體的實(shí)驗(yàn)研究[J].第四軍醫(yī)大學(xué)學(xué)報(bào),2004(10):890-892.

[18] L?sser C,Eldh M,L?tvall J. Isolation and characterization of RNA-containing exosomes.[J]. Journal of visualized experiments : JoVE,2012(59).

[19] Xiao-Xia Yang,Chao Sun,Lei Wang,Xiu-Li Guo. New insight into isolation, identification techniques and medical applications of exosomes[J]. Journal of Controlled Release,2019,308(C).

[20] Théry C,Amigorena S,Raposo G,Clayton A. Isolation and characterization of exosomes from cell culture supernatants and biological fluids.[J].Current protocols in cell biology,2006,Chapter 3(1).

[21] Théry C, Witwer KW, Aikawa E, et al. Minimal information for studies of extracellular vesicles 2018 (MISEV2018): a position statement of the International Society for Extracellular Vesicles and update of the MISEV2014 guidelines. J Extracell Vesicles. 2018;7(1):1535750. Published 2018 Nov 23. doi:10.1080/20013078.2018.1535750

[22] 王帥,李超然,章茜茹,黃桂林.人尿源性干細(xì)胞來源外泌體的提取及鑒定[J].中國(guó)組織工程研究,2022,26(13):2056-2061.